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中文题名:

 白及及其同属植物染色体计数及核型分析    

姓名:

 汪萌    

学号:

 2021804294    

保密级别:

 公开    

论文语种:

 chi    

学科代码:

 105600    

学科名称:

 医学 - 中药学    

学生类型:

 硕士    

学位:

 中药学硕士    

学校:

 南京农业大学    

院系:

 园艺学院    

专业:

 中药学(专业学位)    

研究方向:

 中药资源开发与利用    

第一导师姓名:

 刘丽    

第一导师单位:

  南京农业大学    

第二导师姓名:

 王馨    

完成日期:

 2023-06-02    

答辩日期:

 2023-06-02    

外文题名:

 Chromosomme Count and Kryotype Analysis of Bletilla and its Congeners    

中文关键词:

 白及属 ; 染色体 ; 制片优化 ; 核型分析    

外文关键词:

 Bletilla. ; chromosome ; production optimization ; karyotype analysis    

中文摘要:

     白及[Bletilla striata (Thunb.) Reichb.f.]、小白及[B. forosana (Hayata) Schltr.]、黄花白及(B. ochracea Schltr.)、华白及[B. sinensis (Rolfe) Schltr.]是兰科白及属的传统药用植物。中国药典(2020年版,一部)规定中药材白及为植物白及的干燥块茎;小白及和黄花白及多作为云南民间药物,常代替白及入药;华白及因其种质的稀缺性被列入《中国物种红色名录》,入药较少。近年虽有报道贵州白及(B. guizhouensis Jie Huang & G. Z. Chen)为白及属新发现物种,但迄今暂未被《中国植物志》收录。因此本研究主要涉及白及、小白及、黄花白及3种白及属植物。

      由于多年的无序开采,白及资源急剧下降,现已被列入《中国植物红皮书——稀有濒危植物》第1册,并为《濒危野生动植物国际贸易公约》的保护物种。白及前期的报道多集中在生理、药理药化等领域,而细胞学相对较少。中药材基原的可靠性是规范化生产的首要问题,本研究以白及、小白及和黄花白及3种白及属植物的根尖为试验材料,优化了各物种的染色体制片技术,并分析了其核型特征,研究结果可为白及种质资源鉴定及种间亲缘关系和演化趋势研究提供参考,对白及规范化栽培技术完善和杂交育种具有一定的参考价值。主要研究结果及结论如下:

      1、通过对白及属药用植物染色体制片技术分析确定主要影响因素,利用单因素试验优化了白及属植物的染色体制片技术。结果表明:染色体制片中解离是关键,解离的温度和时间都会对制片效果造成显著影响。白及、小白及以及黄花白及3种植物的根尖经过8-羟基喹啉预处理6 h,染色体形态清晰;65℃水浴条件下,使用1 mol·L-1的盐酸解离10 min,染色体分散效果较好;改良苯酚品红溶液染色8 min,所得制片背景干净易观察。
       2、通过分析白及、小白及和黄花白及的核型数据,推测了白及属3种植物亲缘关系及进化趋势。结果表明:白及属3种植物均为二倍体,白及与黄花白及分别有32条染色体,染色体基数为16,而小白及则有30条染色体,染色体基数为15;染色体核型公式,白及为2n=2x=32=30m+2sm,小白及为2n=2x= 30=28m+2sm,黄花白及为2n=2x=32=28m+4sm,三者均是由近中部着丝点区(sm)和中部着丝点区(m)构成;白及的染色体的相对长度的组成为2n=2x= 6L+10M2+12M1+4S;小白及的相对长度的组成为2n=2x=8L+6M2+8M1+8S;黄花白及染色体的相对长度的组成为2n=2x=6L+6M2+12M1+8S。核不对称系数白及为57.59%,小白及为57.68%,黄花白及为57.51%,这3种植物的的核型均属于1B型,说明3种白及存在着较强的亲缘关系,且3种白及进化程度都较为原始。

外文摘要:

      Bletilla striata (Thunb.) Reichb.f., B.forosana (Hayata) Schltr., B.ochracea Schltr. and B.sinensis (Rolfe) Schltr. are traditional medicinal plants of the genus Bletilla. The Chinese Pharmacopoeia (2020 edition, part one) stipulates that B. striata is the dry tuber of B. striata. B. forosana and B. ochracea are mostly used as folk medicines in Yunnan, often replacing B. striata as medicines; because of the scarcity of its germplasm, it is included in the ' Red List of Chinese Species ' and is less used as medicine. In recent years, it has been reported that B.guizhouensis Jie Huang & G.Z.Chen is a new species of Bletilla, but it has not been included in the Flora of China. Therefore, this study mainly involves three species of B. striata, B. forosana and B. ochracea.

     Due to years of disorderly exploitation, the resources of B.striata have declined sharply. It has been included in the first volume of the ' Chinese Plant Redbook-Rare and Endangered Plants ' and is a protected species of the ' Convention on International Trade in Endangered Wild Fauna and Flora '. The previous reports of B. striata were mostly concentrated in the fields of physiology, pharmacology and pharmacology, while cytology was relatively few. The reliability of the origin of Chinese medicinal materials is the primary problem of standardized production. In this study, the root tips of three species of B. striata, B. forosana and B. ochracea were used as experimental materials, the chromosome preparation technology of each species was optimized, and the karyotype characteristics were analyzed. The results can provide reference for the identification of germplasm resources of B. striata and the study of interspecific genetic relationship and evolution trend, and have certain reference value for the improvement of standardized cultivation techniques and cross breeding of B. striata. The main results and conclusions are as follows :

    1、The main influencing factors were determined by analyzing the chromosome preparation technology of Bletilla medicinal plants, and the chromosome preparation technology of Bletilla plants was optimized by single factor test. The results show that dissociation is the key in chromosome preparation, and the temperature and time of dissociation will have a significant impact on the production effect. The root tips of B. striata, B. forosana and B. ochracea were pretreated with 8-hydroxyquinoline for 6 h, and the chromosome morphology was clear. Under the condition of 65 ℃ water bath, 1 mol·L-1 hydrochloric acid was used to dissociate for 10 min, and the chromosome dispersion effect was better. The modified phenol fuchsin solution was dyed for 8 min, and the background of the film was clean and easy to observe.

     By analyzing the karyotype data of B. striata, B. forosana and B. ochracea, the genetic relationship and evolutionary trend of three species of Bletilla were speculated. The results showed that the three species of Bletilla were diploid. B. striata and B. ochracea had 32 chromosomes with a base number of 16, while B. forosana had 30 chromosomes with a base number of 15. Chromosome karyotype formula, B. striata was 2n = 2x = 32 = 30m + 2sm, B. forosana was 2n = 2x = 30 = 28m + 2sm, B. ochracea was 2n = 2x = 32 = 28m + 4sm, the three are composed of near middle centromere region (sm) and middle centromere region (m); the relative length of the chromosome of B. striata was 2n = 2x = 6L + 10M2 + 12M1 + 4S; the relative length of B. forosana was 2n = 2x = 8L + 6M2 + 8M1 + 8S; the relative length of chromosome of B. ochracea was 2n = 2x = 6L + 6M2 + 12M1 + 8S. The nuclear asymmetry coefficient of B. striata was 57.59 %, that of B. forosana was 57.68 %, and that of B. ochracea was 57.51 %. The karyotypes of these three plants all belonged to 1B type, indicating that there was a strong genetic relationship among the three B. striata, and the evolution degree of the three B. striata was relatively primitive.

参考文献:

[1]白艳荣, 蒋亚莲, 王进英. 不同除草期对白及生长发育及品质的影响[J]. 安徽农学通报, 2020, 26(05): 50-53.

[2]曹雯静, 李虹侠, 唐源江, 等. 4个火焰兰属内及属间杂交新组合F_1代核型分析[J]. 亚热带植物科学, 2014, 43(01): 19-23.

[3]陈黎, 楚亚琴, 王启斌, 等. 鄂西北地区白及中总酚含量的测定[J]. 中国药师, 2013, 16(11): 1679.

[4]陈黎, 朱海涛, 杜士明, 等. 鄂西北地区白及的多糖含量研究[J]. 中国药师, 2014, 17(01): 62-64.

[5]陈意兰, 廖海民, 王峥峰, 等. 橙花破布木染色体制片及核型分析[J]. 植物研究, 2021, 41(05): 684-689.

[6]迟明艳, 黄勇, 李勇军, 等. 海拔高度与黔产白及9种主要成分相关性研究[J]. 中国实验方剂学杂志, 2016, 22(16): 36.

[7]代建丽, 张露, 郭鲜蒲, 等. 赤霉素及光照对白及种子无菌萌发的影响[J]. 种子, 2016, 35(07): 18-21

[8]丁鸿, 邱东萍, 陈少雄. 植物染色体标本的制备和染色体核型分析研究进展[J]. 南方农业学报, 2012, 43(12): 1958-1962.

[9]丰国蕊, 赵李姗, 朱雅静, 等. 紫果西番莲根尖染色体制片技术研究[J]. 山西农业大学学报(自然科学版), 2021, 41(03): 42-49.

[10]高粉红, 何丽君, 陈海军, 等. 野生黑果枸杞染色体加倍及其多倍体核型分析[J]. 分子植物育种, 2020, 18(22): 7522-7529.

[11]龚晔, 景鹏飞, 魏宇昆, 等. 中国珍稀药用植物白及的潜在分布与其气候特征[J]. 植物分类与资源学报, 2014, 36(2): 237-244.

[12]郭乔仪, 王洪丽, 张凤梅, 等. 白芨块茎塑料袋催芽移栽技术[J]. 农村实用技术, 2015, (9): 36.

[13]国家药典委员会. 中华人民共和国药典: 一部[M]. 北京: 中国医药科技出版社, 2020: 106.

[14]韩杰, 孔德仪, 彭方仁. 薄壳山核桃染色体制片技术的优化与核型分析[J]. 分子植物育种, 2018, 16(16): 5240-5246.

[15]何海玲, 顾龚平, 张卫明. 白及多糖胶涂膜保鲜樱桃番茄的研究[J]. 食品科学, 2007, (04): 336-340.

[16]胡凤莲. 白及的栽培管理及应用[J]. 陕西农业科学, 2011, (3): 268.

[17]胡智玲, 李书芹, 周彦芳, 等. 白及治疗消化道出血的临床观察[J]. 河北北方学院学报(自然科学版), 2017, 33(12): 35-36.

[18]贾袭伟, 贠小杰, 久西加, 等. 半夏根尖染色体压片技术研究[J]. 寒旱农业科学, 2023, 2(01): 94-98.

[19]蒋俊, 陈红霞, 汤兴利, 等. 基于中医药美白理论的白及研发思考[J]. 中草药, 2017, 48(11): 2313-2320.

[20]蒋姗姗, 梁英民, 王作军. 利用个人电脑系统及photoshop软件进行核型分析[J]. 第四军医大学学报, 2000, (07): 860.

[21]靳松, 莫丽玲, 陈泽斌, 等. 小白及组培快繁技术研究[J]. 昆明学院学报, 2019, 41(06): 67-70.

[22]孔伟华, 徐建波, 崔琦, 等. 白及化学成分、药理作用和白及多糖提取工艺的研究进展[J]. 中医药信息, 2021, 38(09): 69-78.

[23]黎君, 杨恒, 周天华. 白芨SSR引物筛选及群体遗传多样性研究[J]. 西北植物学报, 2016, 36(7): 1343.

[24]李剑美, 李学玲, 陈锦盛, 等. 白芨及其替代品化学成分预试及薄层色谱分析[J]. 云南化工, 2020, 47(02): 50-54+58.

[25]李懋学, 张赞平. 作物染色体及其研究技术[J]. 北京: 中国农业出版社1996: 1-37.

[26]李荣峰, 梁高强, 刘彩华. 白芨黄酮类化合物的提取工艺优化[J]. 江西农业学报, 2023, 35(02): 194-197+203.

[27]李晓, 张鸽香, 胡凤荣, 等. 美国流苏根尖预处理及核型分析[J]. 分子植物育种, 2019, 17(19): 6447-6454. .

[28]李智辉, 杨发建, 宋芝兰, 等. 白及属药用植物的资源分布及繁育[J]. 中国中医药现代远程教育, 2020, 18(08): 72-74.

[29]梁韶, 宋娟, 雷秀娟, 等. 四种人参属药用植物的核型分析[J]. 人参研究, 2017, 29(02): 6-10.

[30]林珊珊. 三种秋茄核型分析及种子萌发、苗期耐热研究[D]. 广东: 佛山科学技术学院, 2019. 10-19

[31]林晓璇, 陈林静, 容晨毓, 等. 铺地黍染色体制片优化及核型分析[J]. 草业科学, 2021, 38(01): 89-98.

[32]刘成才, 饶春梅, 宋昌俊, 等. 种植方式与栽培措施对白及产量和有效成分含量的影响研究[J]. 中草药, 2021, 52(21): 6669-6676.

[33]刘丹, 夏雪, 吴益梅, 等. 植物染色体制片效果影响因素的解析[J]. 浙江农业科学, 2015, 56(10): 1654-1657.

[34]刘佳庚, 李际红, 郭海, 等. 流苏树根尖染色体制片技术优化及核型分析[J]. 分子植物育种, 2020, 18(24): 8223-8232.

[35]刘泉, 傅祖芸. 一种植物染色体图像核型分析系统[J]. 计算机工程与应用, 2000, 03: 71-74.

[36]刘霜, 刘林莉, 刘琴, 等. 白及块茎与须根多糖提取及止血作用研究[J]. 贵州科学, 2022, 40(01): 19-23.

[37]龙海梅, 张楠卿, 李宗艳, 等.金盏菊根尖细胞染色体制片与核型分析[J]. 浙江农业学报, 2020, 32(01): 86-92.

[38]罗一然, 李雄军. 大理长叶兰染色体制片技术研究[J]. 现代园艺, 2023, 46(09): 51-53.

[39]吕婉婉, 赵明, 秦慧存, 等. 白及花花青素测定与体外抗氧化活性研究[J]. 基因组学与应用生物学, 2017, 36(12): 5269-5276.

[40]马宏荣, 沈宁东, 朱惠琴. 田葛缕子根尖染色体压片技术及核型分析[J]. 分子植物育种, 2020, 18(24): 8233-8239.

[41]马世宏, 金玲, 揭邃等. 白及-丹皮酚包合物在化妆品中的应用研究[J]. 日用化学品学, 2009, 32(06): 30-33.

[42]马世宏, 金玲, 王守香, 等. 中药白及在牙膏中的应用研究[J]. 中国野生植物资源, 2009, 28(03): 32-35.

[43]马晓雨, 刘焕臻, 孙国语, 等. 美洲黑杨×大青杨染色体制片优化及核型分析[J]. 中南林业科技大学学报, 2021, 41(07): 142-149.

[44]马秀萍, 杨清秋, 蒋朝晖, 等. 高效液相色谱法测定白及中肉桂酸[J]. 中成药, 2011, 33(9): 1631.

[45]马誉, 康晓玲, 郑明燕, 等. 6种蔷薇属植物的染色体核型分析[J/OL]. 分子植物育种: 1-8[2023-05-29]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20230331.1358.016.html

[46]缪立丹. 染色体图像软件系统研究[D]. 成都: 四川大学, 2001: 5-10.

[47]倪子轶, 刘群录. 白芨的栽培及景观应用探讨[J]. 现代农业科技, 2018,18: 136-137.

[48]彭芙, 万峰, 熊亮, 等. 白及不同提取部位抗耐甲氧西林金黄色葡萄球菌的体内外活性[J]. 中国实验方剂学杂志, 2013, 19(17): 217-220

[49]乔永刚, 宋芸. 利用EXCLE制作核型模式图[J]. 农业网络信息, 2006, (10): 97-98.

[50]秦亚东, 汪荣斌, 周宙. 不同产地白及多糖含量测定[J]. 安徽科技学院学报, 2014, 28(3): 41.

[51]秦永燕, 姚沁涛. 遗传学实验中染色体制片技术的方法改进[J]. 长治学院学报, 2019, 36(02): 47-48.

[52]任风鸣, 刘艳, 李滢, 等. 白及属药用植物的资源分布及繁育[J]. 中草药, 2016, 47(24): 4478-4487.

[53]任启飞, 戚燕强, 张家春, 等. 白及块茎不同基质催芽效果研究[J]. 现代农业科技, 2016, (14): 62.

[54]沈玉堂. 染色体核型分析系统研制与开发[D]. 杭州: 浙江大学, 2003, 8-14

[55]盛茂银, 陈庆富. 淫羊藿属十二个种的核型[J]. 云南植物研究, 2007, (03): 309-315.

[56]石丽敏, 卢华兵, 胡贤女. 白及的研究现状[J]. 农业科技通讯, 2016, (05): 6-8.

[57]宋志姣, 曾黎明, 李悦, 等. 滇产小白及不同种源、不同生长部位多糖含量测定[J]. 亚太传统医药, 2019, 15(11): 62-64.

[58]孙桂芳, 赵艺璇, 杨建伟, 等. 秋英属植物核型分析[J]. 河北大学学报(自然科学版), 2019, 39(04): 412-420.

[59]孙音, 李兆鹏, 房义福, 等. 大叶女贞染色体制片及核型分析[J]. 山东林业科技, 2019, 49(04): 1-5.

[60]孙宇龙, 侯北伟, 耿丽霞, 等. 基于SRAP标记的白芨遗传多样性和遗传结构评价[J]. 药学学报, 2016, 51(1): 147.

[61]万江红. 白及的栽培管理及应用[J]. 农技服务, 2017, 34(01): 53.

[62]王爱民, 王永林, 郑林, 等. 白及药材中多糖的含量测定[J]. 中国中药杂志, 2009, 34(22): 2963.

[63]王芳, 张硕, 兰进, 等.种植年限对栽培白及不同部位多糖和多酚的影响[J]. 山东化工, 2022, 51(19): 8-10..

[64]王明君, 张雅琼, 黄莉, 等. 白及属4个种种子形态特征的电镜扫描分析[J]. 分子植物育种, 2017, 15(11): 4659-4666.

[65]王萍, 杨琴, 王吉明, 等. 西瓜属6个主要变种的核型分析[J]. 西北农林科技大学学报(自然科学版), 2019, 47(10): 120-128.

[66]王启斌, 王迎朝, 董永成, 等. 白及相关制剂与医用材料的研究进展[J]. 中成药, 2018, 40(08): 1808-1811.

[67]王琼, 苏智先, 宋会兴, 汤泽生. 植物染色体数目及其变异与生境关系初探[J]. 生态学杂志, 2001, (05): 8-11.

[68]王尚萍. 黄花白及多糖结构解析及其抗肿瘤活性研究[D]. 西安: 陕西师范大学, 2017. 1-2

[69]王桃银, 郭巧生, 汪涛. 21个药用菊花栽培类型的核型分析[J]. 南京农业大学学报, 2012, 35(06): 13-18.

[70]王未希, 杨兴玉, 朱炳褀. 白及化学成分及应用的研究进展[J]. 光明中医, 2021, 36(07): 1183-1186.

[71]王小丽. 五种南海海水鱼的染色体核型分析和显带[D]. 广东: 暨南大学, 2007, 7-8.

[72]王晓, 崔平, 吴冉, 等. 白及胶载外源性重组人表皮生长因子促进伤口愈合机制[J]. 中国组织工程研究, 2016, 20(20): 2964-2971.

[73]王瑶, 范宝军, 葛冬, 等. 中药白及治疗消化性溃疡研究进展[J]. 临床军医杂志, 2021, 49(07): 830-832.

[74]王永, 熊鹏飞, 郑听, 等. 药用植物白及种质资源核型分析[J]. 种子, 2021, 40(02): 20-25+34.

[75]王跃华, 陈燕, 周欢, 等. 白及种苗的最佳生长条件筛选[J]. 种子, 2017, 36(12): 67-70

[76]位明君, 聂昊辰, 张建, 等.帚状裂稃草染色体制片与核型分析[J/OL]. 分子植物育种: 1-8[2023-05-29]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20221219.1138.001.html

[77]魏科辉, 马琼琼. 白及联合奥美拉唑治疗胃溃疡临床效果观察[J]. 社区医学杂志, 2019, 17(16): 1002-1004.

[78]吴凤云, 邱丽莎, 崔秀明, 等. 白及品质特征影响因素研究[J]. 中国医院药学杂志, 2016, 36(21): 1838.

[79]武江, 李森, 李子瑜, 等. 黄花菜染色体制片及荧光原位杂交技术体系的建立[J]. 山西农业大学学报(自然科学版), 2020, 40(06): 13-20.

[80]杨斌. 白及生肌膏对肛肠病术后创面HSP70基因表达的临床观察[J]. 当代医学, 2018, 24(15): 99-101

[81]杨丽云, 程远辉, 苏泽春, 等. 3种白及属植物化学成分分析[J]. 安徽农业科学, 2021, 49(19): 173-176.

[82]张超, 段九菊, 曹冬梅, 等. 太行山野生萱草染色体数鉴定与核型分析[J]. 山西农业科学, 2013, 41(08): 767-770.

[83]张桂芳, 任改婷, 周佐葡, 等. 白鹤芋染色体制片技术优化及核型分析[J]. 草业科学, 2017, 34(3): 7.

[84]张连杰, 袁晓菲, 孙庆. 白及在创面修复中的作用机制研究[J]. 中医学报, 2023, 38(01): 71-76.

[85]张秀玥, 李明荣, 张启东, 等. 不同微肥施用量对白芨产量及品质的影响[J]. 耕作与栽培, 2008(2): 38.

[86]张雅琼, 黄莉, 尹元萍, 等. 白及属3个种花部特征和花粉形态的扫描电镜观察比较[J]. 西南农业学报, 2019, 32(12): 2942-2948+2979.

[87]张燕, 黎斌, 李汝娟, 等. 白及种子的无菌萌发过程观察和组培快繁研究[J]. 北方园艺, 2013(3): 158-160

[88]张燕君, 孙伟, 何艳, 等. 白及属植物资源评价与可持续利用的现状与展望[J]. 中国中药杂志, 2018, 43(22): 4397-4403.

[89]张颖, 黎丽倩, 刘强. 海南及粤西外来入侵植物假臭草染色体核型分析[J]. 草地学报, 2019, 27(01): 274-278.

[90]赵云青, 黄颖桢, 刘保财, 等. 马蓝染色体制片技术优化[J]. 福建农业科技, 2021, 52(07): 1-9.

[91]中国科学院昆明植物研究所. 云南植物志: 第14卷[M]. 北京: 科学出版社, 2003: 348-352.

[92]中国科学院中国植物志编辑委员会. 中国植物志: 第17卷[M]. 北京: 科学出版社, 1999: 19-52.

[93]周天华, 黎君, 丁家玺, 等. 白及种质资源及其近缘种的SSR指纹图谱研究[J]. 西北植物学报, 2017, 37(4): 673-681.

[94]朱根发, 杨志娟, 王碧青, 等. 兜兰亚属12种植物的核型分析[J]. 热带亚热带植物学报, 2011, 19(02): 152-158.

[95]朱娇, 黄卫昌, 曹建国, 等. 我国白及属植物资源评价及其筛选[J]. 热带作物学报, 2020, 41(08): 1553-1559.

[96]朱新焰, 石亚娜, 丛琨, 等.白及属三种药用植物皂苷的组织化学定位研究[J].现代中药研究与实践, 2019, 33(04):1-4.

[97]朱新焰, 石亚娜, 杨竹雅, 等. 滇产白及与其习用品的对比鉴别研究[J]. 云南中医中药杂志, 2018, 39(06): 72-75.

[98]宗宪春, 张博. 五彩椒根尖染色体压片技术及核型分析[J/OL]. 分子植物育种: 1-8[2023-05-29]. 05, 29. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20210909.1054.010.html

[99]祖宇瑶, 费世星, 高承贤, 等. 白及茎秆抗肿瘤作用的初步研究[J]. 中华中医药学刊, 2018, 36(10): 2431-2434.

[100]左世梅. 药用植物白及化学成分和药理作用研究进展[J]. 中国现代医生, 2021, 59(04): 189-192.

[101]Chen J, Lu L, Li Y, et al. Preparation and evaluation of Bletilla striata polysaccharide/graphene oxide composite hemostatic sponge[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 130.

[102]Chen X Q, Gale S W, Cribb P J. Flora of China. Vol 25[M]. Beijing: Science Press & St. Louis: Missouri Botanical Garden Press, 2009: 209.

[103]Cheng L Z, Rui Z, Ling L H, et al. Polysaccharides from tubers of Bletilla striata: Physicochemical charac-terization, formulation of buccoadhesive wafers and preliminary study on treating oral ulcer.[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 122: 1035-1045.

[104]Chung M Y, J López-Pujol, Chung M G. Low genetic diversity in marginal populations of Bletilla striata (Orchidaceae) in southern Korea: Insights into population history and implications for conservation[J]. Biochemical Systematics & Ecology, 2013, 46: 88-96.

[105]Diao H J, Li X, Chen J N, et al. Bletilla striata poly saccharide stimulates inducible nitric oxide synthase and proinflammatory cytokine expression in macrophages[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2008, 105(2): 85-89.

[106]Ding L, Shan X D, Zhao X L, et al. Spongy bilayer dressing composed of chitosan-Ag nanoparticles and chitosan Bletilla striata polysaccharide for wound healing applications[J]. Carbohydrate Polymers, 2017, 157:1538-1547.

[107]Dong L, Xia S, Luo Y, et al. Targeting delivery oligonucleotide into macrophages by cationic polysaccharide from Bletilla striata successfully inhibited the expression of TNF-alpha[J]. Journal of Controlled Release, 2009, (3): 214-220.

[108]Felix L P, Guerra M. Variation in chromosome number and the basic number of subfamily Epidendroideae (Orchidaceae)[J]. Botanical Journal of the Linnean Society, 2010, 63(2):234-278.

[109]Fu L K, Jin J M . China plant red data book - rare and endangered plants. Volume 1[M]. Beijing: Science Press, 1992, 494-495.

[110]Gao H, Wang Y M, Song Z J, et al. Effect of different growth regulating regulators on the sterile germination and seedling of Bletilla striata[J]. Genomics and Applied Biology, 2017, 36(2): 784-790.

[111]Guan Q X, Sun D D, Zhang G Y, et al. Docetaxel-loaded self-assembly stearic acid-modified Bletilla striata polysaccharide micelles and their anticancer effect: Preparation, characterization, cellular uptake and in vitro evaluation [J]. Molecules, 2016, 21 (12): E1641.

[112]Guan Q, Zhang G, Sun D, et al. In vitro and in vivo evaluation of docetaxel-loaded stearic acid-modified Bletilla striata polysaccharide copolymer micelles[J]. PLoS One, 2017, 12(3): 1-15.

[113]Guo J J, Dai BL, Chen N P. et al. The anti-Staphylococcus aureus activity of the phenanthrene fraction from fibrous roots of Bletilla striata[J]. BMC complementary and alternative medicine, 2016, 16(1).

[114]Huang J, Wang M, Chen L J, et al. Bletilla guizhouensis (Orchidaceae; Epidendroideae), a new species from Guizhou China: evidence from morphological and molecular analyses[J]. Phytotaxa, 2019, 406(5): 279-286.

[115]Huang Y B, Shi F L, Wang L M, et al. Preparation and evaluation of Bletilla striata polysaccharide/carboxymethyl chitosan/Carbomer 940 hydrogel for wound healing[J]. nternational Journal of Biological Macromolecules, 2019.

[116]Jiang F, Li W, Huang Y, et al. Antioxidant, Antityrosinase and Antitumor Activity Comparison: The Potential Utilization of Fibrous Root Part o Bletilla striata (Thunb.) Reichb. f[J]. Plos One, 2013, 8(2): e58004.

[117]Kamada T, Haruma K, Ito M, et al. Time trends in helicobacter pylori infection and atrophic gastritis over 40 years in Japan[J]. Helicobacter, 2015, 20(3): 192-198.

[118]Kuo S R, Wang T T, Huang T C. Karyotype analysis of some Foromsan gymnosperms[J]. 1972.

[119]Lang D, Xindi S, Xiao L Z, et al. Guangli Yu Spongy bilayer dressing composed of chitosan Agnanoparticles and chitosan Bletilla striata polysaccharide for wound healing applications[J]. Carbohydrate Polymers, 2017,(157) :1538-1547

[120]Levan A . Nomenclature for centromeric position on chromosomes.[J]. Heriditas, 1964, 52.

[121]Li X H, Chen R Y, Tanaka R. Reports on chromosome numbers of some orchids cultivated in China[J]. La Kromosomo, 1992, (67/68):2301.

[122]Mao X, Wang F, Yang C T, et al. Studies on the rapid propagation technique of Bletilla striata [J] . Hubei Agricultural Sciences, 2017, (20): 3898-3900.

[123]Mehdy E S, Fang S C. Impact of dextran sulfate in culture media on titration of vesicular stomatitis virus[J]. Journal of virological methods, 2020, 275:113758.

[124]Peng Q, Li M, Xue F, et al. Structure and immunobiological activity of a new polysaccharide from Bletilla striata[J]. Carbohydrate Polymers, 2014, 107:119-123.

[125]Stebbins G L. Chromesomal evolution in higher plants[J]. London: Edward Arnold, 1971, 85-104.

[126]Sun A J, Liu J Q, Pang S Q, et al Two novel phenanthraquinones with anti-cancer activity isolated from Bletilla striata[J]. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters, 2016, 26(9): 2375-2379.

[127]Yue L, WANG W, WANG Y, et al. Bletilla striata polysaccharide inhibits angiotensin II-induced ROS and inflammation via NOX4 and TLR2 pathways[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2016, 89: 376-388.

[128]Zhang C, Yanan H, Shi C Z, et al. Effect of Polysac- charides from Bletilla striata on the Healing of Dermal Wounds in Mice.[J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2019, 2019: 1-9.

[129]Zhang K, Liu Y, Wang C, et al Evaluation of the gastroprotective effects of 20 ( S ) -ginsenoside Rg3 on gastric ulcer models in mice[J]. J Ginseng Res, 2019, 43(4): 550-561.

[130]Zhang L L, Cao B, Bai C K. New reports of nuclear DNA content for 66 traditional Chinese medicinal plant taxa in China[J]. Caryologia, 2013, 66(4): 375.

[131]Zhang Q, Qi C, Wang H, et al. Biocompatible and degradable Bletilla striata polysaccharide hemostasis sponges constructed from natural medicinal herb Bletilla striata[J]. Carbohydrate Polymers, 2019, 226: 115304.

[132]Zhang Y., Hou, B., Zhang, W. et al. Isolation and characterization of novel microsatellite markers for Bletilla striata and inter-specific amplification in 2 congeneric species[J]. Conservation Genetics Resources, 2015, 7: 483-485.

[133]Zonneveld B J M, Lelttch I J, Bennett M D. First nuclear DNA amounts in more than 300 angiosperms[J]. Annals of Botany, 2005, (2): 229-244.

[134]Zu Y Y, Liu Q F, Tian S X, et al. Effective fraction of Bletilla striata reduces the inflammatory cytokine production induced by water and organic extracts of airborne fine particulate matter (PM2.5) in vitro[J]. BMC Complementary and Alternative Medicine, 2019, 19.

中图分类号:

 R28    

开放日期:

 2023-06-16    

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